Результаты и обсуждение
Для построения калибровочных графиков измеряли оптическую плотность гуминовых кислот. Для этого брали 1 г коммерческого гумата "Гумат+С" (г. Иркутск), растворяли в 200 мл дистиллированной воды. Готовили ряд разведений, на основе которых строили калибровочный график при длинах волн 440 нм и 490 нм.
Рис.1. Калибровочный график измерения оптической плотности при длине волны 440
Рис.2. Калибровочный график измерения оптической плотности при длине волны 490
График показывает, что рабочий диапазон позволяет определить концентрацию гумата в пределах от 0 до 0,16 г/л.
Для извлечения гуминовых кислот из отработанного компоста после выращивания грибов (Agaricus bisporus) навеску 1 г растворяли либо в 50 мл 0.1 н раствора NaOH, либо в 50 мл дистиллированной воды. Экстракцию проводили на водяной бане в течение 1 часа. Суспензию центрифугировали при 5000 оборотах в течение 15 минут. Гомогенат анализировали на ФЭКе при длинах волн 440 нм и 490 нм.
Проростки растений, в зависимости от срока выращивания и концентрации гумата, даны в приложении.
Ростовые показатели растений представлены на рис.3 и рис.4
Рис.3. Общая масса растений пшеницы
Рис.4. Масса надземной части растений пшеницы
На рис.3 и рис.4 видно, что наибольшая масса растений пшеницы на 45 сутки вегетации, а наименьшая - на 14 сутки. За исключением растений, выращенных на среде с добавлением водного экстракта гумата (0,1 г/л) и водного экстракта гумата (0,2 г/л), у которых наибольшая масса на 43 сутки вегетации, а также исключения составляют растения, выращенные на среде с добавлением щелочного экстракта гумата (0,1 г/л), у которых на 34 сутки самая большая масса.
Статистический анализ достоверности различий общей массы растений показал, что между концентрациями одного варианта достоверно проявляются различия у растений, выращенных на питательной среде с добавлением водного экстракта гумата (0,1 г/л и 0,2 г/л) на 14 сутки культивирования, а различия по качеству источника гумата достоверны между растениями, выращенными на питательных средах с добавлением коммерческого препарата (0,2 г/л) и щелочного экстракта гумата (0,2 г/л) на 14 сутки культивирования, а так же щелочного экстракта гумата (0,1 г/л) и водного экстракта гумата (0,2 г/л) на 45 сутки культивирования.
Достоверностью различий надземной массы растений между концентрациями одного варианта являются растения, выращенные на среде, с добавлением водного экстракта гумата (0,1 г/л и 0,2 г/л) на 14 сутки культивирования, а по качеству источника гумата достоверны различия у растений, выращенных на средах с добавлением щелочной экстракции гумата (0,1 г/л) и коммерческого препарата (0,1 г/л и 0,2 г/л).
Содержание хлорофилла в надземной части растений пшеницы в зависимости от состава питательных сред показано на рис.5 и рис.6, а так же в табл.2 и табл.3
Рис.5. Содержание хлорофилла а
На рис.5 видно, что в растениях, выращенных на питательной среде с добавлением водного экстракта гумата (0,1 г/л) с течением времени повышается количество хлорофилла а, в отличие от растений, выращенных на среде с добавлением коммерческого препарата гумата (0,2 г/л), где количество хлорофилла а сначала увеличивается (14 и 34 сутки), а потом (43 сутки) резко уменьшается. У растений, выращенных на остальных питательных средах с гуматом, сначала понижается содержание хлорофилла а (14 и 34 сутки), а потом, на 43 сутки, количество хлорофилла увеличивается.
Статистический анализ достоверности различий содержания хлорофилла а между концентрациями одного варианта показал, что различия достоверно проявляются у растений, выращенных на питательной среде с добавлением щелочной экстракции гумата (0,1 г/л и 0,2 г/л) на 34 сутки культивирования, коммерческого препарата гумата (0,1 г/л и 0,2 г/л) на 34 сутки культивирования и коммерческого препарата гумата (0,1 г/л и 0,2 г/л) на 43 сутки культивирования.
По качеству источника гумата достоверных различий не отмечено.
